Zell- und Gewebekultur

von: Toni Lindl

Spektrum Akademischer Verlag, 2002

ISBN: 9783827411945 , 329 Seiten

5. Auflage

Format: PDF, OL

Kopierschutz: DRM

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Preis: 38,00 EUR

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Zell- und Gewebekultur


 

Vorwort zur 5. Auflage

8

Inhalt

10

1 Räumliche und apparative Voraussetzungen, Sicherheitsvorschriften

14

1.1 Der Reinigungsbereich

14

1.2 Der Vorbereitungs- und Verarbeitungsbereich

15

1.3 Der Sterilbereich

16

1.4 Sicherheitsvorschriften und Entsorgung

30

1.5 Generelle Probleme

33

1.6 Literatur

34

2 Kulturgefäße und ihre Behandlung

36

2.1 Züchtung von Zellen auf Glas

36

2.2 Züchtung von Zellen auf Plastikmaterial

37

2.3 Züchtung von Zellen auf anderen Materialien

41

2.4 Spezielle Kulturgefäße

42

2.5 Reinigung und Vorbehandlung von Glaswaren

46

2.6 Vorbehandlung von Kulturgefäßen mit Substanzen zur Modifizierung der Oberflächeneigenschaften

50

3 Steriltechnik – Kontaminationen

54

3.1 Der Sterilbereich

55

3.2 Laborreinigung

56

3.3 Hygiene

56

3.4 Aseptische Arbeitstechnik

56

3.5 Sterilisationsverfahren

61

3.6 Antibiotika

71

3.7 Mycoplasmen

74

3.8 Kreuzkontaminationen

84

3.9 Literatur

85

4 Zellkulturmedien

86

4.1 Herstellung gebrauchsfertiger Medien

86

4.2 Anmerkungen zu einigen Rezepturen

90

4.3 Serumfreie Medien

94

4.4 Zusätze zu Medien

102

4.5 Reinstwasser für Zell- und Gewebekulturen

108

4.6 Literatur

112

5 Routinemethoden zur allgemeinen Handhabung und Subkultivierung von Zellen

114

5.1 Mediumwechsel

114

5.2 Subkultivierung von Monolayerkulturen

117

5.3 Subkultivierung und Suspensionskulturen

122

5.4 Zellzahlbestimmung

123

5.5 Langzeitlagerung und Kryokonservierung von Zellen

128

5.6 Versand von Zellen

133

5.7 Probleme mit Zellen

133

5.8 Literatur

134

6 Primärkulturen

135

6.1 Kultivierung von Herzmuskelzellen des Hühnchens

136

6.2 Kultivierung von Herzmuskelzellen aus neonatalen Rattenherzen

138

6.3 Primärkulturen aus frischen Hautproben (Biopsien) menschlichen Ursprungs

139

6.4 Isolierung von Lymphocyten aus Vollblut mittels Dichtegradientenzentrifugation

140

6.5 Primärkulturen aus Mäusecerebellum (Kleinhirn)

142

a

142

c

142

6.6 Gewinnung einer Zellkultur aus soliden Humantumoren

144

6.7 Gewinnung von Keratinocyten

146

6.8 Humane adhärente Zelllinien

150

6.9 Literatur

150

7 Organkulturen

153

7.1 Präparation eines Säugerdünndarms als Beispiel für eine Organpräparation in der Pharmakologie

156

7.2 Präparation eines peripheren Nerven (oberes Halsganglion) zur Messung der neuronalen Übertragung ( Neurotransmission)

158

7.3 Leberschnitte in vitro

160

7.4 Literatur

163

8 Kultur spezieller Zelltypen

164

8.1 Hybridomzellen

164

8.1.1 Prinzipieller Verfahrensablauf

164

8.1.2 Antigene und Adjuvantien

166

8.1.3 Tierwahl für die Immunisierung

166

8.1.4 Immunisierung

166

8.1.5 Kultur der Myelomzellen

166

8.1.6 Konditionierte Medien und „feeder“-Zellen

168

8.1.7 Elektrofusion von Zellen

170

8.1.8 Screening tierischer Hybride

173

8.2 Hepatocyten

174

8.3 Phäochromocytomzellen PC 12

178

8.4 Endothelzellen

179

8.5 Dreidimensionale Zellkultur

184

8.6 Literatur

187

9 Die Massenkultur

190

9.1 Monolayer-Kulturen für große Zellmengen

191

9.1.1 Roller-Kultur

192

9.1.2 Wannen-Stapel (multi-tray, cell factory)

192

9.1.3 Kapillar-Perfusion (Kapillarreaktor, Dialysator)

192

9.1.4 Microcarrier-Kultur (Mikroträger)

193

9.2 Suspensionskultur für große Zellmengen

196

a

197

b c

197

9.2.1 Flasche (Celline) mit Silikonmembran für Suspensionskulturen hoher Dichte

198

9.3 Literatur

198

10 Zellkulturen aus Geweben von Invertebraten und kaltblütigen Vertebraten

199

10.1 Invertebraten

199

10.1.1 Temperatur

199

10.1.2 Atmosphäre

199

10.1.3 Medien

199

10.1.4 Subkultur

200

10.1.5 Suspensionskultur

200

10.1.6 Aufbewahrung und Lagerung

202

10.2 Kaltblütige Vertebraten

203

10.2.1 Fischzellkulturen

203

10.3 Literatur

204

11 Pflanzenzellkulturen

206

11.1 Herstellung von Kulturmedien

206

11.2 Kalluskultur aus teilungsfähigem Pflanzengewebe

210

11.3 Pflanzenzellkulturen als Suspensionskulturen

214

11.4 Isolierung von Einzelzellen und Protoplasten aus Pflanzenzellkulturen

215

11.5 Elektrofusion von Pflanzenprotoplasten

217

11.6 Fusion von Protoplasten mittels Polyethylenglykol

217

11.7 Antherenkultur

220

11.8 Embryonenkultur

223

11.9 Einfrieren von Pflanzenzellsuspensionen

224

11.10 Literatur

226

12 Spezielle Methoden der Zellbiologie

227

12.1 Versuche zur In-vitro-Toxizität

227

12.1.1 Zellkulturmethoden

228

12.1.2 Konzentration der applizierten Substanz in vitro und zeitlicher Verlauf der Applikation

229

12.1.3 Erholungsperiode

230

12.1.4 Endpunkte

230

12.2 Methoden zur In-vitro-Toxizitätsprüfung

233

12.2.1 Prüfung auf wachstumshemmende Eigenschaften einer Substanz

233

12.2.2 Prüfung auf akute Zelltoxizität

235

12.2.3 Vitalfärbung zur Testung auf Lebensfähigkeit von Zellen

238

12.2.4 MTT-Test zur Messung von Lebensfähigkeit und Wachstum

239

12.2.5 Nachweis mutagener Substanzen

240

12.3 Transfektion

241

12.3.1 Transfektion nach der Calciumphosphatmethode

241

12.3.2 Transfektion mittels Elektroporation

243

12.3.3 Lipofektion in nicht-adhärenten Zellen

245

12.4 Klonierung

246

12.4.1 Limited-Dilution-Klonierung

246

12.4.2 Klonierung in Weichagar

247

12.4.3 Isolierung von adhärenten Zellklonen

249

12.5 3H-Thymidineinbau als Proliferationskontrolle

250

12.6 Inhibition des Zellwachstums (quantitative Neutralrotmethode)

251

12.7 Ermittlung der Anheftungseffizienz („plating efficiency“)

252

12.8 Virusvermehrung und Transformation mit Epstein-Barr-Viren ( EBV)

254

12.9 Populationsverdopplungszeit

256

12.9.1 Populationsverdopplungszeit bei Suspensionskulturen

257

12.10 Zellsynchronisation

257

12.10.1 Zellsynchronisation durch Abkühlen

257

12.10.2 Zellsynchronisation durch Schütteln

257

12.10.3 Zellsynchronisation durch Colcemid-Block

258

12.10.4 Zellsynchronisation durch Serumentzug

259

12.10.5 Zellsynchronisation durch Isoleucinmangel

259

12.11 Cytometrie

260

12.11.1 Klonierung von Zellen mittels eines FACS

262

12.11.2 Bestimmung der Zellzykluszeit einer proliferierenden Population mittels Bromdesoxyuridineinbaus

264

12.11.3 Bestimmung von verschiedenen Subpopulationen aus peripheren Humanleukocyten

266

12.12 Chromosomenpräparation

267

12.13 Literatur

269

13 Stammzellen

271

13.1 Gewinnung und Kultur hämatopoetischer Stammzellen

271

13.2 Embryonaler Stammzell-Test (EST) (Spezies: Maus)

277

13.2.1 Grundlegende Verfahren

278

13.3 Dezimale geometrische Konzentrationsreihen

289

13.4 Löslichkeit der Testchemikalien

290

13.5 Literatur

291

14 Kleines Zell- und Gewebekulturlexikon

292

14.1 Literatur

306

15 Anhang

307

15.1 Was kann die Ursache von schlechtem Zellwachstum sein?

307

15.2 Berechnungen in der Zellkultur

308

15.3 Nachschlagewerke und Handbücher der Zell- und Gewebekultur

311

15.4 Zeitschriften

313

15.5 Literaturdienst

313

15.6 Institutionen und Firmen, die Zellkulturkurse durchführen

313

15.7 Wissenschaftliche Gesellschaften für Zellkultur

314

15.8 Übersichtswerke zur Beschaffung von Geräten, Labormaterial und Reagenzien

314

16 Lieferfirmen und Hersteller

315

Index

323

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